PRACTICA DE ELECTROFORESIS DE HEMOGLOBINA 29/1/2015

ELECTROFORESIS

MATERIAL:

Gradilla

Tubo de centrifuga

Centrifuga

Estufa

Fuente de alimentacion

Medio soporte

2 pipeta pasteur

Pipeta graduda de 0.5 ,1 ,2 y 5 ml

Espectrofotometro

Pinzas

Reloj

Puente

Fotodensimetro

Cubeta de espectrofotometro

Vidrio de reloj

Papel de fieltro

Probetas de 100 ml

Placa de vidrio 

Cubeta

Aplicador

REACTIVOS:

• Suero fisiológico
• Agua destilada
• Tampon(tris-hidroximetilaminometano,glicocola, y agua destilada)
• Colorante(Rojo ponceau y acido tricloroacetico)
• Decolorante
• Deshidratante(metanol)
• Solucion transparentadora(A: metanol y ciclohexanoma) y (B:acido acético)

MUESTRA:

1.Anticoagular la sangre problema

2.Centrifugar a 3000rpr durante 5 minutos

3.Retirar el plasma

4.Los hematies lo resuspendemos de 4-5 ml de suero fisiologico

5.Centrifugamos los hematies a 3000 rpr durante 5 minutos

6.Retiramos el sobrenadante

7.Repetir el lavado de los hematies 3 veces mas

8.Hemolizar los hematies , añadiendo 1 volumen de estos, 1.5 de agua destilada y 0.5 de cloroformo

9.Mezclamos la muestra

10.Centrifugar la mezcla a 3000rpm durante 20 minutos

11.Retirar el hemolizado

12.Determinar la concentracion de Hb que esta presente en el hemolizado

13.Diluir el hemolizado con agua destilada hasta llegar a 5g/dl

FUNDAMENTO:

Para separar el diferente tipo de hemoglobina en función de su carga eléctrica o punto de isoelectrico

DESARROLLO:

1.Sumergir las tiras en tampon durante 10 minutos

2.Absorver el exceso de tampon de las tiras , situandolas en entre dos hojas de papel de fieltro

3.Montar las tiras sobre el puente

4.Verter en la cubeta de tampon suficiente para que los electrodos queden cubiertos

5.Introducir el puente con las tiras,en el interior de la cubeta

6.Depositar la dilucion del hemolizado en el interior de un vidrio de reloj y tocarla

7.Situar la dilucion del hemolizado , mediante el aplicador previamente cargado , sobre el extremo catodico y a 1.5 cm de su borde libre

8.Conectar la cubeta de alimentacion

9.Encender la fuente de alimentacion y aplicar una corriente de 200 voltios durante 90 minutos

10.Apagar el alimentador y desconectarlo de la cubeta

11.Sumergir las tiras, con su carga absorvente hacia abajo , en el colorante elegigo ,durante 10 minutos

12.Decolorar las tiras , hasta que se vea el fondo blanco

RESULTADO:

LECTURA DE LOS RESULTADOS

1.Deshidratar las tiras, sumergiendolas en metanol durante 1 minuto

2.Sumergir las tiras en una mezcla de soluciones transparentadoras preparadas recientemente , se efectua bajo agitacion y durante 1  o 2 minutos

3.Extender las tiras sobre una placa de vidrio

4.Calentar la placa en una estufa , a una temperatura de 60-70 grados hasta la transparencia de las tiras

5.Dejar enfriar la placa

6.Desprender las tiras de la placa

INTERPRETACIÓN CLÍNICA DE LOS RESULTADOS OBTENIDOS

La electroforesis permite detectar anomalias hemoglobinicas cuantitativas o cualitativas.

• Cuantitativas:Se deben al aumento o la disminución de un tipo normal de Hb
• Cualitativas:Pequeños cambios de aminoácidos que componen las cadenas de globina de alguna molécula de Hb

HOJA DE TRABAJO:

1.¿De que material son las tiras empleadas en esta practica?
Tipo de Hb
2.¿Cual es el decolorante del rojo ponceau?
Es igual que el negro amido
3.¿Como se llama el aparato que lee las bandas de las tiras y las transforma en curvas de área mensurable?
Fotodensimetro
4.¿En que enfermedad aparece una banda electroforetica de Hb S?
En la anemia falciforme
5.¿Cual es la Hb normal mas electronegativa?
Beta -Talasemia

RESULTADOS OBTENIDOS:

PRACTICA CALCULOS DE INDICES ERITROCITARIOS 26/1/2015

INDICES ERITROCITARIOS(HEMOGLOBINA,RECUENTO DE RBC , HTO)

HEMOGLOBINA

Desarrollo:

1. Rotulamos 6 tubos de ensayo (blanco patrón ,muestra) y lo depositamos en una gradilla
2. Sacamos del frigorífico dos tipos diferentes de sangre 
3. Preparamos el blanco con una pipeta  cogemos 2.5 ml  del liquido de trabajo y lo vaciamos en el patrón , muestra 1 y muestra 2
4. Con una micropipeta de 10-100 ul y con la punta amarilla añadimos 10 ul de calibrador en el tubo de patrón y lo mezclamos con una pipeta pasteur o con la micropipeta
5. Añadimos 10 ul de sangre en cada tubo de muestra y lo mezclamos con la micropipeta
6. Incubamos durante 3 minutos a temperatura ambiente 
7. Lo introducimos en el espectrofotometro 

HTO

Desarrollo:

1.Sacamos del frigo la sangre y la depositamos en un tubo de ensayo
2.El tubo lo depositamos en una gradilla
3.Con un capilar , lo introducimos en el tubo de sangre y llemanos las 3/4 partes de sangre
4.Lo limpiamos con una gasa
5.En la punta de abajo colocamos plastilina
6.Lo metemos en la centrifuga durante 5 minutos a 1200 rpr
7.Ponemos el capilar en el lector de microhematocrito

RECUENTO DE RBC

Desarrollo:

1. Del frigorífico sacamos la sangre venosa que esta colocada en una bandeja.

2. Movemos la sangre para arriba y para abajo con cuidado, para que no se junten todas las proteínas y no solo salga leucocitos.

3. Quitamos la pinza que tiene la parte superior de la bolsa.

4. Introducimos la goma de la bolsa de sangre dentro del tubo de ensayo.

5. La bolsa de sangre hay que subirla un poco mas arriba que el tubo de ensayo, cuando ya se vea que esta el volumen que se desea, volvemos a bajar la bolsa de sangre.

6. Antes de sacar el tubo de la sangre, cogemos un papel y lo sacamos con cuidado para no manchar la mesa y lo limpiamos.

7. Volvemos a ponerle la pinza, y meterlo en el frigorífico.

8. Depositamos el tubo de ensayo encima de la mesa de trabajo dentro de la gradilla.
9. Incorporamos la pipeta de Thoma dentro del tubo de ensayo, en donde esta la sangre y vamos cogiendo poco a poco 1 ml de sangre con la ayuda de una prepipeta y una goma de plástico
10. Cuando sacamos la pipeta diluidora del tubo de ensayo lo limpiamos  la punta con una gasa
11. Incorporamos la pipeta en el tubo de ensayo del liquido de hayen y cogemos hasta completar la pipeta ,(101ml)
12.Volvemos hacer el mismo paso anterior, limpiamos la punta de la pipeta
13.Ponemos el dedo abajo,para que no salga el liquido y arriba tenemos que quitar la prepipeta y poner otro dedo para moverlo de 2 a 3 minutos en sentido horizontal
14.Quitamos  el dedo de abajo y desechamos las tres primeras gotas 
15.Mojamos con agua las lineas que lleva la cámara de recuento
16.Ponemos un cubreobjetos en la cámara de recuento(en medio)
17.Depositamos la pipeta diluidora en el extremo del cubre y cuando entre una gota quitamos la pipeta , hacemos en el otro sentido la misma operación
18.Dejamos reposar unos segundo al aire libre
19.Lo visualizamos microscopicamente con el objetivo de 40x(enfocamos el retículo y contamos los leucocitos presentes en los cuadros de las esquinas superiores e inferiores)

ACTIVIDADES:
1.
DATOS: 
HCT:20% Y 70% 
HB: 12.72G/DL Y 12.13G/DL
RBC:4.400.000

VCH:HCT/RBC*10

VCH:70/4.400.000*10=1.59X10-4 FL

VCH:20/4.400.000*10=4.54X10-5 FL

HCM:HB/RBC*10

HCM:12.72/4.400.000*10=2.89X10-5 PG

HCM:12.13/4.400.000*10=27.56 PG

CHCM:HB/HCT *100

CHCM:12.72/20*100=63.6G/DL

CHCM:12.13/20*100=60.64G/DL

CHCM:12.72/70*100= 18.17G/DL

CHCM:12.13/70*100=17.32G/DL

2.

VCM:X1+X2/2

VCM:1.59X10-4 + 4.54X10-5/2=1.022X10-4 FL

IDH:

3.

X1+X2+X3+X4/4

63.6+60.65+18.17+17.32/4 = 39.935

ADH:((63.6-39.935)^2 + (60.65-39.935)^2 + (18.17-39.935)^2 + (17.32-19.935)^2 )/ (4-1) = 25.653 ADH

PRACTICA DE HIERRO

HIERRO

MATERIAL:
Espectrofotometro
Cubetas
Rotulador de vidrio
Tubos de plástico
Pipeta graduada de 1 ml
Pipeta automatica de 200 ul
Vaso de precipitado para residuos
Papel de fieltro
REACTIVOS:
R1 Tampon (acetato pH 4.9 100mmol/L)
R2 Reductor(ácido ascorbico 99.7%)
R3 Color (ferroZine 40mmol/L)
IRON CAL(patrón primario acuoso de hierro 100ug/dl)
MUESTRA:
Sangre venosa
FUNDAMENTO:

• El hierro férrico presente en la muestra y unido a la transferrina es liberado por la acción guanidino
• El hierro ferrico libre es reduciod a ferroso por la hidroxilamina
• El hierro ferroso reacciona con la ferrozina para producir un complejo coloreado

DESARROLLO:
Lo primero de todo hacemos el reactivo de trabajo disolviendo el contenido de tubo R2(reductor) en un frasco de R1(Tampon), a continuación los tapamos y lo mezclamos
1.Cogemos cuatro tubos de ensayo
2.Rotulamos los tubos de ensayo (blanco RT , patrón , blanco muestra , muestra)
3.En el tubo blanco RT añadimos :1 ml de reactivo de trabajo , 1 gota de R3 y 200 ml de agua destilada
4.En el tubo patrón añadimos:1 ml de reactivo , 1 gota de R3 y 200 ul de patrón
5.En el tubo blanco muestra añadimos: 1 ml de reactivo , y 200 ul de muestra
6.En el tubo muestra añadimos: 1 ml de reactivo , 1 gota de R3 y 200 ul de muestra
7.Lo dejamos reposar
8.Lo introducimos en el baño maría durante 5 minutos a 37 grados
9.Leemos los resultados con el espectrofotometro
RESULTADO:
LECTURA DE LOS RESULTADOS
Sideremia (en ug/dl)= A muestra - A blanco de la muestra / A del patrón * concentración del patrón
INTERPRETACIÓN CLÍNICA DE LOS RESULTADOS OBTENIDOS
Valores normales:

• Mujeres:55-140 ug/dl
• Hombres :70-155 ug/dl

HOJA DE TRABAJO:
1.¿por que tenemos un tubo BR?
Para calcular la absorbancia del contenido frente a agua destilada
2.¿Que muestras no son validas?
Las lipemicas o hemolizadas
3.¿En que unidades se mide la sideremia?
Se mide en ug/dl
RESULTADOS OBTENIDOS:

• A de la muestra:0.600
• A de la BM:0.400
• A del P:0.253
• Concentración del patrón80

Sideremia (en ug/dl)= A muestra - A blanco de la muestra / A del patrón * concentración del patrón
0.600*0.400/0.253*80= 75.88 ug /dl
valoracion de los resultados :
El sujeto estudiado se encuentra en los valores normales

PRACTICA DETERMINACIÓN DE HEMOGLOBINA EN SANGRE 19-1-2015

HEMOGLOBINA

MATERIAL:

Espectofotometro

Cubetas

Pipeta

Micropipeta

4 Tubo de ensayo

Agua destilada

Vaso de precipitado

Papel de filtro

3 tubos de hemolisis

REACTIVOS:

Hemoglobin 50x que esta hecho por: 

1. ferricianuro de potasio 0.60mmol/L
2. Cianuro de potasio 77mmol/L
3. Dihidrogeno fosfato de potasio 2mmol/L

Hemoglobin cal

MUESTRA:

Sangre venosa

FUNDAMENTO:

La hemoglobina es oxidada por la acción del ferrocianuro a metahemoglobina y mediante el cianuro se convierte en cianmetahemoglobina

La intensidad de color formado es proporcional  a la concentración de hemoglobina presente en la muestra ensayada

DESARROLLO:

1. Se hace el reactivo de trabajo añadiendo el bote de R2 al  frasco de R1 , lo agitamos y ponemos el nombre
2. Preparamos el patrón que esta compuesto por tres fases : 1.añadimos en un tubo de ensayo 250 ul(1 patrón y tarro normal)2.Añadimos en otro tubo de ensayo 250 ul y 250 agua destilada(2 patrón 1/2)a continuación vamos mezclando la muestra con una pipeta pasteur 3.Añadimos en un tubo de ensayo 250 ul y 250 ml de agua y lo mezclamos 4.Cogemos otros dos tubos y añadimos en cada uno de ellos diferente sangre (la primera sangre es cojida del frigorífico y es 0+ y la segunda muestra es sangre de valentin 0+)
3. Cogemos tres tubos de ensayo
4. Los rotulamos (blanco , patrón y muestra)
5. En el tubo blanco añadimos:205 ml de reactivo de trabajo 
6. En el tubo patrón añadimos:2.5 ml de reactivo de trabajo y 10 ul de calibrador
7. En el tubo muestra añadimos:2.5 ml de reactivo de trabajo y 10 ul de muestra
8. Lo dejamos reposar durante 3 minutos
9. Leemos los resultados en el espectrofotometro

RESULTADO:

LECTURA DE LOS RESULTADOS

 Hb = A de la muestra /A patron * 7.5

Hb= 0.800/0.500*7.5= 12

INTERPRETACIÓN CLÍNICA DE LOS RESULTADOS OBTENIDOS
Los valores normales :

• Hombres:14-18 g/dl
• Mujeres:11-16 g/dl
• Niños:10-14 g/dl

HOJA DE TRABAJO:
1.¿En que se basan los métodos de determinación de la hemoglobina?
Se basan en las propiedades fisicoquimicas de la molécula de hemoglobina
2.¿Cual es el método recomendado por el comité internacional para la estandarizacion de la hematologia?
El método colorimetrico de la cianmetahemoglobina por su exactitud y precisión
3.¿De donde procede el 20 de la formula para calcular la concentración?
Procede de la cianmetahemoglobina

RESULTADOS OBTENIDOS:
Los resultados son de una mujer , esta comprendido en los valores normales

RECUENTO DE PLAQUETAS CON HEMOCITOMETRO 15/1/15

PLAQUETAS

MATERIAL:

Tubo de ensayo

Pipeta diluidora de Thoma

Gasas

Camara de recuento

Cubreobjetos

Microscopio

Placa de petri

Papel de filtro

prepipeta con su goma

REACTIVO:

Liquido del laboratorio spinreact

Agua destilada

MUESTRA:

Sangre venosa

FUNDAMENTO:

Se diluye la sangre con el liquido spinreact para contar las células presentes en algunos de los cuadrados de los reticulocitos

DESARROLLO:
1.Vertemos un 1 ml de liquido de spinreact en un tubo de ensayo
2.Cogemos un 1 ml de sangre con la pipeta de Thoma 
3. Cuando sacamos la pipeta del tubo de ensayo la limpiamos con una gasa

4.Introducimos la pipeta diluidora en el tubo de ensayo del liquido y cogemos hasta 101 ml 
5.Agitamos la pipeta durante 5 minutos,en posición horizontal
6.Desechamos las 5 primeras gotas
7.Cargar la camara de recuento , en una placa de petri en cuyo interior se deposita un trozo de papel de fieltro mojado de agua y lo tapamos con la tapadera
8.Dejamos reposar unos 15 minutos
9.La visualizamos en el microscopio, primero con el objetivo de 10x y despues con el de 40x
10.Por ultimo contamos en numero de plaquetas presentes en un cuadro grande central 

RESULTADOS:

LECTURA DE LOS RESULTADOS

Las plaquetas son corpúsculos redondeados u ovalados de tamaño muy pequeño y muy refrigerantes

• Muy reducida,se efectúa una dilucion menor de la muestra
• Muy elevada,se efectúa una dilucion mayor de la muestra

PLT/MM3=P*V*D*1000

PLT=10*740*100*1000=740.000.000plt/mm3

HOJA DE TRABAJO:

1.¿Que tipo de pipeta diluidora se utiliza en el recuento de plaquetas?

La pipeta de Thoma

2.¿Que funciones desempeña el liquido de dilucion empleado?

• Rompe los hematíes 
• Evita la agregación de las plaquetas entre si 
• Facilita la visualización de las plaquetas al hacerlas refrigerentes

3.¿Cuanto liquido de dilucion se necesita para efectuar un ensayo?

1 ml aproximadamente

4.¿Con que se puede preparar una camara humeda?

Con una placa de petri cerrada, en cuyo interior se deposita un papel de fieltro con agua

5.¿Con que objetivo se cuentan las plaquetas?

40x

6.¿Como se aprecian los trombocitos en este recuento?

Se aprecian como corpúsculos redondeados u ovalados , de tamaño muy pequeño y muy refrigerentes

RESULTADOS OBTENIDOS:

• Numero de plaquetas contadas en un cuadrado grande: 740
• Numero de plaquetas por mm3 de sangre: 740.000.000plt/mm3

VALORACIÓN DE LOS RESULTADOS:

El numero de plaquetas obtenido es:

Alto
OBSERVACIONES:
También se puede hacer esta practica con micropipeta :
la proporción seria :1/100(1 de sangre y 100 de liquido)

• Cogemos 0.005 ml de sangre (que es 5 ul ),se coge con una micropipeta de 5 ul
• Cogemos 0.495 ml de liquido(que es 495 ul), se coge con una micropipeta de 500 ul

RECUENTO DE PLAQUETAS EN FROTIS SANGUINEOS 9/01/2015

PLAQUETAS

Material:

Papel

Boligrafo

Gradilla

Capilar

Lanceta

Algodón

Alcohol

Papel de filtro

Microscopio

Portaobjetos

Reactivo:

Panoptico rapido

Muestra:

Sangre anticoagulada

Desarrollo:

1.Con una gasa y alcohol nos desinfectamos el dedo , con ayuda de una lanceta nos pinchamos en el dedo central y la primera gota se tira.Con un capilar cogemos la sangre que nos sale del dedo

2.Depositamos tres gotas de sangre y hacemos un frontis sanguíneo

3.Teñimos la muestra con panóptico rápido y lo enjuagamos con agua destilada

4.Lo dejamos secar en posición vertical o si tarda mucho en seca podemos usar el menchero bunser , añadimos una gota de aceite de inmersión

5.Observamos con el microscopio de 100x 

6.Contamos el numero de plaquetas presentes en 10 campos microscópicos

Resultados

Lectura de los resultados:

PLT/MM3=PLT/C*20000

• plt/mm3(numero de plaquetas por mm3 de sangre)
• plt/c(media del numero de plaquetas contadas en varios campos microscópico)

1. 50
2. 60
3. 50
4. 40
5. 36
6. 35
7. 25
8. 40
9. 32
10. 40

SANGRE DAVID

1. 
   SANGRE ESTEFANIA
   
   
   
   
   
   
   
   SANGRE MIA
   
   
   
   
   
   
   

Interpretación clínica de los resultados obtenidos:

Tiene trombocitosis

Hoja de trabajo:

1.En condiciones normales,¿cuantas plaquetas por campo microscópico hay en zona de un frontis sanguíneo donde los eritrocitos no están superpuestos?

De 5 a 25 trombocitos por campo

Resultados obtenidos:

• Numero de plaquetas contadas en 10 campos microscopicamente 408
• Media del numero de plaquetas contadas en 10 campos microscopicos 40,8
• Numero de plaquetas por mm3 de sangre 816.000 plaquetas /mm3

Valoración de los resultados:

El plt/mm3 obtenido implica que el sujeto tiene:

Trombocitosis

RECUENTO DE LEUCOCITOS (WBC) 12/1/15

LEUCOCITOS

MATERIAL:

Pipeta diluidora de thoma (para ver los glóbulos rojos, por lo cual necesitamos la que lleva la bola roja)

Tubo de goma con la boquilla 

Cubreobjetos

Camara de recuento

Microscopio

Para film

Papel

Bolígrafo

REACTIVOS:

Liquido de Turck , que se prepara de la siguiente manera:

• 2 ml de ácido acético glacial(Produce lisis de los eritrocitos sin alterar a los leucocitos)
• 1 ml de violeta de genciana al 1%(Tiene núcleo de los leucocitos para observarse mejor y se puede sustituir por azul de metileno)
• 100 ml de agua destilada

MUESTRA:

Sangre venosa

FUNDAMENTO:

Consiste en la determinación del numero de leucocitos presentes en un volumen determinado de sangre.

DESARROLLO:

1. Del frigorífico sacamos la sangre venosa que esta colocada en una bandeja.

2. Movemos la sangre para arriba y para abajo con cuidado, para que no se junten todas las proteínas y no solo salga leucocitos.

3. Quitamos la pinza que tiene la parte superior de la bolsa.

4. Introducimos la goma de la bolsa de sangre dentro del tubo de ensayo.

5. La bolsa de sangre hay que subirla un poco mas arriba que el tubo de ensayo, cuando ya se vea que esta el volumen que se desea, volvemos a bajar la bolsa de sangre.

6. Antes de sacar el tubo de la sangre, cogemos un papel y lo sacamos con cuidado para no manchar la mesa y lo limpiamos.

7. Volvemos a ponerle la pinza, y meterlo en el frigorífico.

8. Depositamos el tubo de ensayo encima de la mesa de trabajo dentro de la gradilla.
9. Incorporamos la pipeta de Thoma dentro del tubo de ensayo, en donde esta la sangre y vamos cogiendo poco a poco 1 ml de sangre con la ayuda de una prepipeta y una goma de plástico
10. Cuando sacamos la pipeta diluidora del tubo de ensayo lo limpiamos  la punta con una gasa
11. Incorporamos la pipeta en el tubo de ensayo del liquido de hayen y cogemos hasta completar la pipeta ,(101ml)
12.Volvemos hacer el mismo paso anterior, limpiamos la punta de la pipeta
13.Ponemos el dedo abajo,para que no salga el liquido y arriba tenemos que quitar la prepipeta y poner otro dedo para moverlo de 2 a 3 minutos en sentido horizontal
14.Quitamos  el dedo de abajo y desechamos las tres primeras gotas 
15.Mojamos con agua las lineas que lleva la cámara de recuento
16.Ponemos un cubreobjetos en la cámara de recuento(en medio)
17.Depositamos la pipeta diluidora en el extremo del cubre y cuando entre una gota quitamos la pipeta , hacemos en el otro sentido la misma operación
18.Dejamos reposar unos segundo al aire libre
19.Lo visualizamos microscopicamente con el objetivo de 40x(enfocamos el retículo y contamos los leucocitos presentes en los cuadros de las esquinas superiores e inferiores)

RESULTADOS:

LECTURA DE LOS RESULTADOS:
Los azules son los del lado izquierdo y los rosas los del lado derecho

2	5	2	2
1	1	5	2
2	2	7	2
1	9	6	4

2	5	2	2
4	5	3	5
4	3	2	3
4	4	3	3

                                                                                                                                                                   

6	3	2	3
3	1	3	4
6	5	7	1
1	6	4	3

                                                                                                          

4	0	5	1
1	4	3	4
3	1	4	5
6	2	5	3

WBC=L/4*D*10

WBC= 216/4*10*10=5.400leucocitos/mm3 de sangre

INTERPRETACIÓN DE LOS RESULTADOS OBTENIDOS:

• El indice normal de WBC seria entre 5000 y 11000 leucocitos/mm3 de sangre
• La disminución del WBC se produce en las leucopenias
• El aumento se da en las leucocitosis

HOJA DE TRABAJO:
1.¿Cual es el liquido de dilucion utilizado en el WBC?
El Turck
2.¿Para que sirve el violeta de genciana que contiene el liquido de dilucion?
Para teñir los núcleos de los leucocitos
3.¿Con que objetivo se pueden contar los leucocitos?
Con el de 10x o 40x
4.Si la sangre se diluye a 1/10 y se cuentan 100 leucocitos en 2 cuadrados grandes periferico¿Cual es el WBC obtenido?
WBC=L/4*10*D
WBC=100/4*10*20= 5000LEUCOCITOS/MM3 DE SANGRE

RESULTADOS OBTENIDOS:
Leucocitos contados en los 4 cuadrados grandes periféricos : 216
Factor de dilucion: 10
WBC: 5400

VALORACIÓN DE LOS RESULTADOS:
El WBC obtenido es:
Normal
OBSERVACIONES:
Se puede hacer de otra manera diferente a la explica arriba, la cual consiste en :

Con una micropipeta :

• Cogemos 0.05 ml de sangre (que es 50 ul) , lo cual tenemos que cojer 50 ul con una micropipeta de 50 ul
• Cogemos 0.45 ml de liquido ( que es 450 ul), lo cual tenemos que cojer 450 ul de liquido con una micropipeta de 500 ul