sábado, 29 de noviembre de 2014

PRACTICA DETECCIÓN DE CUERPOS DE HEINZ 28/11/14

CUERPOS DE HEINZ
MATERIALES:
Gradilla
Tubo de ensayo
2 Pipeta graduada
Prepipeta
2 Portaobjetos
Sangre venosa
Pipeta pasteur
Microscopio
Para film
Papel de filtro
Baño María
Cronometro
REACTIVOS:
Colorante de cristal de violeta
Agua destilada
Aceite de inmersión
Suero salino 
MUESTRA:
Sangre venosa
DESARROLLO:
Hay dos tipos de desarrollo:
PROCEDIMIENTO 1 (SIN FILTRAR)
1. Del frigorífico sacamos la sangre venosa que esta colocada en una bandeja.
2. Movemos la sangre para arriba y para abajo con cuidado, para que no se junten todas las proteínas y no solo salga leucocitos.
3. Quitamos la pinza que tiene la parte superior de la bolsa.
4. Introducimos la goma de la bolsa de sangre dentro del tubo de ensayo.
5. La bolsa de sangre hay que subirla un poco mas arriba que el tubo de ensayo, cuando ya se vea que esta el volumen que se desea, volvemos a bajar la bolsa de sangre.
6. Antes de sacar el tubo de la sangre, cogemos un papel y lo sacamos con cuidado para no manchar la mesa y lo limpiamos.
7. Volvemos a ponerle la pinza, y meterlo en el frigorífico.
8. Depositamos el tubo de ensayo encima de la mesa de trabajo dentro de la gradilla.
9. Echamos el colorante en un vaso de precipitado.
10. Con la ayuda de una pipeta cogemos 1ml de colorante y lo añadimos en el tubo de ensayo.
11. Con otra pipeta cogemos 1ml de sangre y lo añadimos en el mismo tubo de ensayo.
12. Metemos la muestra a 37ºC durante 5 minutos al baño Maria y lo tapamos con un parafilm.
13. Hacemos una extensión de la muestra obtenida.
14. Observamos microscópicamente y le echamos una gota de aceite de inmersión.
PROCEDIMIENTO 2 (FILTRADO)
1. Del frigorífico sacamos la sangre venosa que esta colocada en una bandeja.
2. Movemos la sangre para arriba y para abajo con cuidado, para que no se junten todas las proteínas y no solo salga leucocitos.
3. Quitamos la pinza que tiene la parte superior de la bolsa.
4. Introducimos la goma de la bolsa de sangre dentro del tubo de ensayo.
5. La bolsa de sangre hay que subirla un poco mas arriba que el tubo de ensayo, cuando ya se vea que esta el volumen que se desea, volvemos a bajar la bolsa de sangre.
6. Antes de sacar el tubo de la sangre, cogemos un papel y lo sacamos con cuidado para no manchar la mesa y lo limpiamos.
7. Volvemos a ponerle la pinza, y meterlo en el frigorífico.
8. Depositamos el tubo de ensayo encima de la mesa de trabajo dentro de la gradilla.
9. Preparamos el colorante con 1ml de agua, 1ml de colorante, 1ml de suero salino y 1ml de sangre.
10. Cogemos con una micropipeta de 1ml el colorante, el agua, el suero salino y la sangre (cada una con diferentes puntas de la micropipeta) y lo metemos en el tubo de ensayo.
11. Metemos la muestra a 37ºC durante 5 minutos al baño Maria y lo tapamos con un parafilm.
12. Hacemos una extensión de la muestra obtenida.
13. Observamos microscópicamente y le echamos una gota de aceite de inmersión.
RESULTADOS:
Los resultados que se observan son pequeñas granulaciones de color purpura que se localizan en la periferia de los hematíes.
HOJA DE TRABAJO:
1.¿Cual es el colorante usado para teñir los cuerpos de Heins?
Cristal de violeta.
2.¿De que color son los cuerpos de Heins teñidos?
Son de color purpura.
3.¿Donde se localizan los cuerpos de Heins?
Se localizan en la periferia de los hematíes.
RESULTADOS OBTENIDOS:
En la sangre ensayada:
se ha encontrado cuerpos de Heins
VALORACIÓN DE LOS RESULTADOS:
El sujeto estudiado:
No tiene una HB inestable.

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